Чашка Петри

Испытуемые образцы в чашках Петри помещают в эксикаторы, в которых поддерживают относительную влажность 95...98 % и температуру 20—...25°С. Образцы испытывают 3...6 раз с осмотром поверхностей через 1, 3, 6 и 12 мес. [c.64]

Инструмент, посуда лупа (4Х), колба коническая с притертой пробкой (250 мл) чашка Петри. [c.151]

Для получения при проведении этого сравнительно простого испытания сопоставимых результатов нужно соблюдать некоторые определенные условия. Вес образца, взятого для испытания, должен находиться в таком соответствии с площадью чашки, чтобы слой вещества на дне чашки не был бы слишком толстым. Толстые слои обычно высыхают с поверхности, вследствие чего в них задерживается некоторое количество летучих веществ. В некоторых методах определения сухого остатка в чашку помещают кусок жесткой проволоки, которой можно разрушать образующуюся поверхностную пленку. Иногда на дно чашки для увеличения поверхности насыпают слой чистого песка, что значительно снижает толщину пленки и уменьшает ее тенденцию задерживать растворитель. Наиболее широко в качестве чашки для таких испытаний применяют круглую металлическую крышку от банки для краски емкостью 0,280 л. Можно, конечно, применять для этой цели стеклянные чашки Петри, но их нужно после каждого определения мыть, а металлическую крышку после однократного применения можно выбросить. [c.683]

Так как в этиловом и метиловом спирте пузыри были очень маленькие, температуру жидкости приходилось несколько повышать, чтобы сделать пузыри более видимыми. В этих условиях пузыри отрывались от поверхности и слегка затемняли картину. Когда же / было ровно 2,4, то фокусное расстояние было очень мало, так что все пузыри оказывались вне фокуса. В опытах со спиртами картина нарушалась из-за конвекции, возникавшей при движении пузырей вверх. Но эта трудность была устранена, когда на поверхность опустили чашку Петри. [c.128]

Приготовляется стерильная чашка Петри со стеклянной подставкой, с одним предметным и тремя покровными стеклами. Питательная агар-агаровая среда плавится в пробирках на водяной бане при 50° С. Агар-агар засевают при помощи нагретой стеклянной палочки (диаметр 6 мм) содержимое перемешивают капля падает с палочки на предметное стекло, помещенное на подставку (стеклянную палочку U-образной формы) в чашке Петри. Два покровных стекла кладут по обе стороны от капли, они не должны ее касаться. Третье стекло помещают на каплю таким образом, что оно образует верхнюю стенку камеры, которая двумя другими сторонами опирается на два боковых покровных стекла. При наложении покровного стекла капля питательной среды растекается. Ее поверхность должна занимать не более половины площади камеры и не подтекать под опорные покровные стекла. Манипулировать надо быстро чтобы избежать затвердевания агар-агара. Кроме того, для этой же цели до нанесения капли следует нагреть предметное стекло. Образуется камера высотой 0,16—0,18 мм (по толщине покровного стекла). [c.30]

Камера помещается в чашке Петри, на дно которой набирают пинеткой около 10 мл дистиллированной воды (для поддержания нужной влажности среды) чашку Петри ставят затем в термостат при 30° С. [c.30]

Питательная среда в трех пробирках плавится на водяной бане. Исследуемая смесь культур, как и в приведенном выше случае, переносится в три пробирки с водой. Из этих пробирок смесь культур пересевается в пробирки с расплавленной питательной средой — из каждой пробирки с водой в отдельную пробирку со средой. Содержимое пробирок с засеянной питательной средой разливают в чашки Петри. [c.32]

Несколько капель водной суспензии переносят на дно стерильной чашки Петри и затем заливают питательной агаровой средой. Или же в чашки Петри наливают стерильную агаровую питательную среду и оставляют для застывания затем добавляют несколько капель водной суспензии спор и, наклоняя чашку, разливают их по всей поверхности агаровой среды. Затем чашки с материалом помещают в термостат, нагретый до надлежащей температуры. За несколько дней споры прорастают, и образуются колонии. Отдельные колонии отбирают и петлей переносят на свежую стерильную питательную среду. Обычно таким образом получается чистая культура. Чтобы убедиться в этом, проросшую культуру снова пересевают разливом на пластинки. [c.32]

Пластификаторы добавляют таким образом, чтобы содержание углерода составляло 0,8% от веса питательной среды, и интенсивно перемешивают в течение 3 мин при 60° С. Полученную смесь наливают по 3 мл в чашки Петри. После охлаждения в каждой чашке производили посев каплей суспензии спор испытываемого штамма. Испытание продолжалось в течение двух недель и более (до 12 недель) при 29 1° С. Устойчивость пластификаторов в конце испытаний оценивалась по размеру выросшей колонии. [c.34]

Суспензию спор распыляют на образцы, помещенные в чашках Петри. Образцы испытывают при 30 2° С и относительной влажности 98—100%. Для испытаний применяют эксикаторы, помещенные в термостат. При определении устойчивости по методу А опытные образцы остаются в указанных условиях в течение 28 дней. Оценка результатов производится невооруженным глазом или под микроскопом при 50—60-кратном увеличении по такой шкале [c.38]

Рис. 13. Поливинилхлоридная трубка (ЧССР), устойчивая против плесневых грибов при испытании в чашке Петри на агаровой питательной среде. Инфицировано смешанной культурой плесневых грибов.

Один из методов сухого нанесения порошка на подложку заключается в том, что чистую каплю ртути вначале прокатывают по насыпанному в чашку Петри порошку [35]. При этом капля равномерно покрывается с поверхности частицами объекта. Эту же каплю ртути затем прокатывают по сетке, покрытой пленкой-подложкой. При этом частицы порошка переносятся на пленку. Многократным прокатыванием можно добиться желаемой плотности распределения объекта на пленке. [c.34]

Пенообразование некоторых представленных соединений было проверено согласно методике DiN 53902. Защитные свойства определялись по отношению к чугуну в испытаниях на фильтре. В чашку Петри, имеющую внутренний диаметр 10 см и плотную крышку, помещается круглый фильтр из черной ленты. Проба (5—10 г) крупной чугунной крошки распределяется равномерно в центре фильтра по кругу, отстоящему примерно на 1,5 см от краев. Крошку готовят из чистого чугуна GG 20 без использования масла и других смазок. Мелкие частицы отсеивают. [c.231]

По окончании эксперимента из бутылей под струей воды над чашкой Петри следует вылить содержимое и промыть образцы. [c.137]

Час 439, 441 Частота 441 Чашка Петри 423 Чехол-седло алюминиевый 213 Число Авогадро 449 [c.475]

Перед испытанием материалов или изделий на плеснестойкость споры плесневых грибков из каждой чистой культуры смывают дистиллированной водой водную суспензию спор всех восьми видов грибков возрастом 14—28 суток сливают в общую колбу, и она должна быть использована для заражения образцов материалов или изделий в течение 6 ч. Доступные поверхности образцов равномерно опрыскивают с помощью пульверизатора суспензией спор грибков и выдерживают в боксе при температуре (25 10) °С и относительной влажности воздуха 80% до высыхания капель, но не более 60 мин. Затем образцы материалов вместе с контрольными образцами питательных сред в стерильных чашках Петри располагают на расстоянии не менее 20 мм друг от друга и не менее 50 мм от стенок камеры (эксикатора). Развитие плесени в питательных средах служит показателем доброкачественности использованной суспензии спор. В камере поддерживают температуру (29 2) °С и относительную влажность воздуха более 90% (условия, наиболее благоприятные для роста плесени). Продолжительность испытаний с момента установления режима —28 суток Через каждые 7 суток крышку эксикатора приоткрывают на 3 мин для притока воздуха. [c.198]

Для проведения лабораторных испытаний необходимо следующее оборудование автоклав, сушилка, инкубаторы, биологические термостаты, центрифуга, стереомикроскопы, чашки Петри, камера Гансена, распылители, фильтры с минимальным диаметром 1 мм и другое типовое лабораторное оборудование. [c.65]

Для изучения роли бактерий в процессе атмосферной коррозии металлов их выращивали методом Коха. С этой целью в чашки Петри наливали агар, который 15 мин выдерживали в условиях свободного доступа воздуха, затем их закрывали и помещали в термостат, где выдерживали при температуре 37 °С в течение 48 ч. После этого культуру микробов применяли для испытаний. Для этого в колбах Эрлемейра емкостью 670 мл на капроновых нитях подвешивали образцы различных металлов, обработанные по общепринятой методике. Культуру бактерий разводили в 2 мл дистиллированной воды, для каждого опыта помещали в колбы (в контрольные колбы наливали также по 2 мл дистиллированной воды, но не обогащенной бактериями). Опыты проводили в лабораторных условиях в течение 40 сут при температуре 18 2 °С, которая не вполне благоприятна для жизнедеятельности бактерий. Несмотря на это, на торцах стальных пластин, помещенных в бактериальной среде, примерно через 24 ч были обнаружены очаги коррозии. В контрольной же колбе признаки коррозии были обнаружены на 9 ч позже. По истечении 20 сут в целях изучения форм бактерий, поселившихся на образцах, последние сразу же после извлечения из колбы обмывали стерильной водой (по 5 мл на образец). После этого под микроскопом МБИ-6 были обнаружены в основном кокки и палочки. Затем продукты коррозии удаляли с помощью соответствующих реактивов для каждого вида металла и образцы выдерживали в эксикаторе в течение 24 ч, после чего их взвешивали. Результаты исследований приведены в табл. П. 4. [c.41]

С этой целью брали стерилизованные чашки Петри с питательной средой МПБ (мясо-питательный бульон). На поверхность образца пипеткой наливали по 5 стерильной дистиллированной воды, которая, стекая, собиралась в чашки Петри. Чашки были помещены в термостат при температуре 35 2°С. Через 24 ч было замечено значительное увеличение роста бакте-риалиных колоний (табл. УП. 3). Из исследуемых полимерных материалов больше всего поселилось бактерий на поверхности пенопласта, находившегося как на открытой площадке, так и в подвальном помещении. Этот материал более других служит питательной средой для микроорганизмов. Бактерий на образцах, помещенных в подвальном помещении, примерно в 2,5 раза больше, чем в открытой атмосфере. Такое своеобразие поселения микроорганизмов объясняется как условиями, в которых они размножаются, так и влиянием метеорологических факторов. В подвальном помещении по сравнению с открытой поверхностью более стабильны влажность и температура воздуха, движение воздушных масс замедлено и поэтому создаются благоприятные условия для жизнедеятельности микроорганизмов. [c.98]

Свежеприготовленный раствор перенести в чашку Петри погрузить в раствор на 15 мин полоску фильтровальной бумаги (70 x 150 мм). Извлечь фильтровальную бумагу из раствора и плотно прижать ее к испытуемому образцу так, чтобы между покрытием и бумагой не образовались воздушные пузыри через 10 мин бумагу снять с покрытия и промыть дистиллированной водой, после чего высушить между листами фильтровальной бумаги. При наличии в покрытии сквозных пор на фильтровальной бумаге образуются синие пятна турнбулевой сини. [c.152]

Опытные образцы обмывают спиртом и тщательно ополаскивают дистиллированной водой, высушивают в термостате при 30° и кладут в чашку Петри с подставкой, состоящей из стекляннош палочки U-образной формы, на предметное стекло. Чашки с содержимым стерилизуют в течение 1 ч при 120° С. Питательная среда [c.23]

В разжиженную засеянную питательную среду опускают стерильную кисточку, потом проводят ею по образцу. Образцы инкубируют на предметном стекле в чашке Петри. Влажность среды обеспечивается водой на дне чашки Петри. Температура инкубирования 30° С, продолжительность — 3 недели. [c.24]

Чтобы освежить культуру и вызвать спорообразование, заплесневевший образец перед испытанием кладут на предметное стекло, помещенное в чашку Петри с водой. Инкубирование ведется в термостате при 30° С в течение 4 дней, после чего образец предварительно просматривается под микроскопом или через лупу для ориентировочного определения типа вегетируюш,ей на образце плесени. [c.25]

Посев при помощи суспензии микроорганизмов или спор. К зрелым, прошедшим обильное спорообразование культурам, находящимся в пробирках, наливают на наклонную поверхность агаровой питательной среды мл стерильной воды. Бактериальной петлей проводят по поверхности колонии, чтобы споры попали в воду. Приготовленную таким образом суспензию вливают в пустую эрленмейеровскую колбу. Для посева из водной суспензии применяют стерильную пипетку, с помощью которой нужное количество суспензии переносят в жидкую питательную среду или на агаровый субстрат в чашках Петри. [c.29]

Метод Абрамса. Этот метод заключается в том, что пластификатор помещают в лунку посреди чашки Петри с питательной средой. По данным Абрамса, этот метод дает такие н е результаты, как и предыдущий. [c.34]

Метод с пленкой мицелия. Фунгицид растворялся в органическом растворителе (трихлорэтилене, циклогексаноне, растворителях Стоддарда или их комбинациях). Кожу пропитывали раствором и затем высушивали в течение 24 ч. Пленку мицелия готовили из суспензии спор на агар-агаре культуры Aspergillus niger в 100 мл дистиллированной воды, добавляя смачиватель. Суспензия спор тщательно распределялась по поверхности стерильной агаровой питательной среды в чашках Петри. Инкубация длилась около 48 ч при 29° С и относительной влажности 85—90%. [c.80]

Обстоятельное исследование 4-нитрофенола как фунгицида для защиты конш проведено Долларом [18], который по материалам, полученным до 1953 г., подытожил данные о биологической эффективности 4-нитрофенола. Доллар установил, что кожи, содержащие 0,2—0,3% 4-нитрофенола, даже при самых неблагоприятных условиях устойчивы к действию плесневых грибов. Эту эффективность 4-нитрофенола как фунгицида для кожи подтвердили Даль и Каплан [12]. Они проводили испытания в чашках Петри, помещенных в тропической камере и в природных условиях (см. табл. 19 и 20). Испытания показали, что требуемая концентрация испытанного фунгицида 0,3%. Орлита [21] рекомендует для консервирования ншрованной яловочной юфти применять 4-нитрофенол, 0,25% от веса кожи, для хромовой сильно жированной юфти—0,35%. При этом для последнего вида кожи рекомендуется смесь двух веществ 0,2% 4-нитро-фенола и 0,15% пентахлорфенола (от веса кожи). Для технических кож с содержанием жира более 10% рекомендуется 0,35 4-нитрофенола или 0,30% пентахлорфенола. [c.82]

Рис. 14. Рост плесени на пластической массе тенит II (США). Испытывалось в чашке Петри на агаровой питательной среде. Инфицировано смешанной культурой плесневых грибов (По Пайеровой, фото Кубец).

Рис. 16. Рост плесневых грибов на стеклоткани, импрегнированной лаком. Испытывалось в чашке Петри на питательной агаровой среде. Инфициро-смешанной культурой плесневых грибов.

Органическое соединение диспергировалось в агаровой питательной среде с добавкой минеральных солен. Содержание углерода в питательной среде было у каждого соединения 0,8%, pH = 6,4 и заметно не изменялось при добавлении сложных эфиров или спиртов. Однако органические кислоты значительно снижали pH питательной среды. Органические кислоты определялись также в питательной среде и корректировались едким натром до pH = 6,4. Питательная среда (налитая в чашки Петри), содержащая испытуемое органическое соединение, засевалась суспензией спор и инкубировалась при 29 1° С в течение 2 недель, не менее. Для каждого соединения определялась его устойчивость к 24 индивидуальным видам плесеней родов Aspergillus, Peni illium и др. Для каждого соединения была рассчитана средняя величина из 24 диаметров колоний, найденных для каждого индивидуального испытываемого организма. Определенные таким путем средние размеры диаметров для всех соединений лежат в пределах О—6,8 см. Эти величины не были включены непосредственно в табл. 31, но оценивались следующим образом. Диаметр колонии О оценивался как степень роста 0 0,1—1 см — как 1 1,1 — 4,0 см — как 2 4,1 — 6,8 см — как 3 а свыше 6,8 см — как 4. [c.112]

Рис. 19. Рост мицелия со спорообразованием на кроющем эмалевом нитролаке для шлифования. Испытывалось в чашке Петри. Испытываемая культура Aspergillus.

Полиэфирные смолы, согласно лабораторным испытаниям Благника (в чашках Петри) 13], обладают относительно малой [c.172]

Земанек [8] разработал методику инкубации в чашках Петри, посредством которой определяется активность летучих фунгицидов, предназначенных для защиты зерновых культур. По широте фунгицидной зоны можно судить о размещении фунгицидных паров вблизи источника вещества. Однако этот метод не дает полной количественной оценки эффективности летучих фунгицидных веществ, предназначенных для защиты промышленных органических материалов. [c.202]

Метод 16 — показатель 18. Защитную способность растворителя в газовой фазе оценивают по предотвращению коррозии металлической пластины (Ст. 10, размер 45x30x2 мм), помещенной над поверхностью исследуемого ПИНС. В отличие от метода 15 испарение растворителя происходит из объема ПИНС, а не из пленки (рис. 13,6). На решетку эксикатора, до уровня которой налита вода, помещают открытый сосуд с 100 г ПИНС (чашка Петри, ГОСТ 10973—75). На специальном приспособлении на расстоянии 2 см над уровнем продукта в эксикатор подвешивают три чистые пластинки. Закрытый эксикатор помещают на 2 ч в термостат с температурой 50 °С и затем выдерживают 24 ч при 20 °С. Коррозию пластинок оценивают аналогично методу 15. [c.93]

Было приведено сравнительное испытание ингибирующего действия предлагаемых композиций, их отдельных компонентов и других составов. Метод испытания заключался в смачивании 2 г обезжиренной крошки серого чугуна на круглом фильтре 2 мл испытуемого раствора. После этого бумагу с крышкой выдерживали в чашке Петри при комнатной температуре. Затем подсчитывалось число пятен коррозии на фильтровальной бумаге. [c.229]

Постоянство температуры в эксикаторе поддерживается ультратермостатом, прогоняющим воду по свинцовым трубкам 4, окружающим нижнюю часть эксикатора. Свинцовые трубки с внешней стороны закрыты слоем асбеста 5. Регулировка температуры осуществляется контактным термометром 6. Очищенный и увлажненный воздух пропускается через эксикатор при открытых кранах 7 и 8. Очистку воздуха и его увлажнение до заданной влажности можно производить, например, так, как это описано в работе [314]. Влажность воздуха в эксикаторе может регулироваться чашкой Петри с соответствующим раствором, помещенной на его дно. Влажность в эксикаторе контролируется либо психрометрически с помощью двух термометров 9, либо волосяным пирометром, который устанавливают непосредственно в эксикаторе. Эксикатор закрывается крышкой 10 и 11. Крышки и все прилегающие к ней части изготавливают из плексигласа. Крышка 10 крепится при помощи болтов, пропущенных через отверстия в железном кольце 12, которое упирается снизу в [c.199]

Определение фотолитического серебра при видимом почернении. Пробы золя по 20 мл каждая экспонировались в маленьких чашках Петри или в сосудах с плоско-параллельными стенками под лампой накаливания мощностью 150 вт от 2 мин. до 1,5 час. При экспонировании чашки непрерывно покачивались (золи в сосудах перемешивались), чтобы все частицы золя могли получить одинаковые экспозиции. Если этого не делать, то кривые видимого почернения искажаются. Следует отметить, что эта операция представляет еще одно преимущество методики работы с жидкими системами. Все частицы золя получают одинаковые экспозиции, в то время как в политых эмульсиях частицы, расположенные в верхнем слое, естественно находятся в более благоприятных условиях, чем частицы нижнего слоя. [c.375]

При испытании в смеси азотной и плавиковой кислот травильный раствор (20% НаЗО , 10% HNOз, 2% НаРз), контрольный раствор (10% НМОд, 3% НзРа). водяная баня, полиэтиленовая бутыль в качестве сосуда для проведения испытания, чашка Петри. [c.136]

Перед испытанием материалов или изделий на плесенестой-кость споры плесневых грибков из каждой чистой культуры смываются дистиллированной водой (на каждую пробирку с хорошо развившейся колонией грибков площадью 8. . . 10 см расходуется 50 мл воды) водная суспензия спор всех семи видов грибков сливается в общую колбу и должна быть использована для заражения образцов материалов или изделий в течение 4 ч. Образцы материалов вместе с контрольными образцами питательных сред в стерильных чашках Петри, развитие плесени на которых служит показателем доброкачественности использованной суспензии спор, располагаются на расстоянии не менее 20 мм друг от друга и от стенок камеры. В камере поддерживаются температура +30 2° С и относительная влажность воздуха 95. . . 100% (условия, наиболее благоприятные для роста плесени) материалы опрыскиваются из пульверизатора водной суспензией грибковой культуры (расход суспензии 1. .. 1,5 Jил на 100 поверхности испытуемых образцов). Образцы считаются выдержавшими испытание на плесенестойкость в том случае, если после выдержки их [c.283]

Энциклопедия по машиностроению XXL

Оборудование, материаловедение, механика и ...